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當前位置:首頁技術文章豬腸上皮細胞 IPEC-J2培養(yǎng)說明

豬腸上皮細胞 IPEC-J2培養(yǎng)說明

更新時間:2026-01-23點擊次數(shù):219

豬腸上皮細胞 IPEC-J2

細胞介紹

 

從分離自新生的未閹割的豬的空腸的正常腸上皮細胞建立,該細胞系攜帶豬C型腫瘤病毒(PCOV)序列及其轉錄物,分別通過PCR和RT-PCR檢測。我們沒有確定這些病毒的感染方式,也不能排除病毒的分泌。在德國,這些病毒被分類為與人有關的BSL 1和與動物有關的BSL 2(TRBA 462)。然而,德國中央生物安全委員會(ZKBS)將這些病毒和受感染的細胞系BSL 2歸類為用于基因改造應用(參考文獻1。6790-10-65).

 

細胞特性

 

1) 來源:豬  腸(空腸)

 

2) 形態(tài):上皮細胞樣  貼壁生長

 

3) 含量:>1x10^6  細胞數(shù)

 

4) 規(guī)格:T25瓶或者1mL凍存管包裝

 

5)用途:僅供科研使用。

三、 細胞傳代操作步驟

A. 貼壁細胞傳代

1. 準備:吸棄舊培養(yǎng)基。

2. 沖洗:沿培養(yǎng)瓶側壁緩慢加入PBS等沖洗液,輕輕晃動后吸棄,去除殘留血清。

3. 消化:加入預熱的胰酶(如T25加1ml),輕輕晃動使胰酶覆蓋所有細胞。

4. 孵育:室溫消化約2分鐘(時間因細胞而異)。

5. 觀察:在顯微鏡下觀察,直至≥90% 細胞變圓、脫落。若未達到,可每30秒檢查一次。

6. 終止:當細胞充分解離后,立即加入兩倍胰酶體積的預熱的wan全培養(yǎng)基終止消化。

7. 吹打:用移液器輕輕吹打瓶壁,使細胞wan全脫落并分散成單細胞懸液。

8. 離心:將細胞懸液轉移至離心管,200 × g 離心 3-5分鐘,棄上清。

9. 重懸與接種:用少量新鮮wan全培養(yǎng)基重懸細胞沉淀,按適當比例稀釋后,接種到新的培養(yǎng)瓶中。

10. 培養(yǎng):放入培養(yǎng)箱。若使用普通瓶蓋,務必旋松瓶蓋以利氣體交換。

B. 懸浮細胞傳代

1. 收集與離心:將細胞懸液全部轉移至離心管,1000 rpm 離心 5分鐘,棄上清。

2. 重懸:加入1-2ml新鮮wan全培養(yǎng)基,輕柔重懸細胞。

3. 接種:按1:2的比例將細胞懸液傳至新T25培養(yǎng)瓶,并補充總培養(yǎng)基量至5-8ml。

4. 培養(yǎng):放入培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng)。

四、 特殊問題處理:運輸中脫落的貼壁細胞

部分貼壁不牢的細胞在運輸中會脫落,屬正?,F(xiàn)象,按以下步驟處理:

1. 收集:將瓶內所有培養(yǎng)基轉入無菌離心管,離心(1200rpm, 3-5min)棄上清。

2. 清洗:用PBS重懸細胞,再次離心(1200rpm, 3-5min)棄去PBS。

3. 消化:加入約1ml 0.25%胰酶,輕柔混勻(勿劇烈吹打),放入培養(yǎng)箱消化1-2分鐘。

4. 終止與分散:取出后輕輕吹打使細胞團分散,迅速加入3-5mlwan全培養(yǎng)基終止消化,離心(1200rpm, 3-5min)棄上清。

5. 重懸與接種:加入5mlwan全培養(yǎng)基重懸,按比例接種到新培養(yǎng)瓶/皿中。

6. 觀察:鏡下觀察。若細胞為單顆或僅有3-5個細胞的小團,可正常培養(yǎng),待其貼壁生長。--細胞凋亡的早期形態(tài)學改變是核染色質濃聚、固縮,聚集在核膜周邊,然后是胞漿濃縮、胞膜起泡,繼而細胞核裂解成若干碎片,細胞膜將胞質和染色質斷片包裹,胞漿內形成多個膜結構尚完整的“小泡"及 “凋亡小體" (apoptoticbody)。這不同于細胞壞死的細胞腫脹、胞膜破裂、細胞崩解。

       根據(jù)凋亡細胞固有的形態(tài)特征,至今為止,已經(jīng)設計了許多不同的細胞凋亡形態(tài)學檢測方法。

流式細胞技術

     流式細胞儀檢測凋亡細胞是通過檢查其光射特征及熒光參數(shù)時行的。細胞穿過流式細胞儀的激光束集點時使激光發(fā)生散射,分析散射光可以提供細胞大小及結構的信息。散射光包括前向散射光和左向角散射光兩種,前向散射光的強度與細胞大小、體積相產,右向角射光的強度與細胞結構的析射性、顆粒性(granu-larity)有關。

     細胞凋亡過程中出現(xiàn)的形態(tài)改變如細胞皺縮、胞膜起泡、核濃縮和碎裂等可以使光散射特性發(fā)生改變。早期凋亡細胞主要表現(xiàn)為前向散射光減弱而右向角散射光增強或不變,前者反映了細胞的皺縮,后者反映了細胞的核逐縮及碎裂。晚期凋亡細胞的前向散射光和右向角散射光均減弱。

     由于光散射牧場生并非凋亡細胞的特異性指標,細胞的機械性損傷和細胞壞死也可以使前向散射光減弱。因此,只有將光散射特性的檢測與熒光參數(shù)的檢測結合起來才能準確地辨認凋亡細胞。

     細胞凋亡過程中核酸內切酶在DNA分子核小體間的降解,導致小分子DNA漏出,核DNA含量下降,細胞熒光染色后作流式細胞儀分析,可以發(fā)現(xiàn)在DNA直方圖上正常二倍體細胞的Go/G1峰前出現(xiàn)一個亞二倍體峰(xub-G1峰,即AP峰--apoptotic peak),代表凋亡細胞。

    根據(jù)此亞二倍體峰可以計算凋亡細胞的百分率。此外,流式細胞術還可以通過測定線粒體膜的電位、溶酶體質子泵的活性及細胞DNA/總蛋白質比例等方法辨認凋亡細胞。

檢測方法:獲取密度1×106細胞/ml左右的細胞懸液,精洗,固定,熒光染料染色,上流式細胞儀分析。

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